巴氏染色液附着力更强、更洁净、保质期更长，粘贴牢固, 透明度好。能够满足各类组织、细胞等不同样本、不同后续处理的粘附力及防脱要求。可快速、牢固的吸附组织和细胞；制片过程中吸附的细胞数量较多、分布均匀，耐受固定、染色、脱水、洗涤及其他药物等的各项处理，使粘附的细胞及组织在后续的处理过程中不易脱落或局部掉片，具有很好的制片效果；在湿润的条件下也适用于处理易漂浮细胞。
 

　　巴氏染色液用于核酸的提取、富集、纯化等步骤。其处理后的产物用于临床体外检测使用。用于多肽、蛋白质的提取、富集、纯化等步骤。其处理后的产物用于临床体外检测使用。用于终止酶标二抗与底物液的荧光反应，完成基于免疫原理的体外诊断检测，仅用于，仅用于确定的检测系统。
 

　　巴氏染色液的如何应，是先将固定后的涂片入水、苏木精染核、盐酸酒精分化、返蓝同HE染色。70%、80%、95%酒精逐级脱水各：1分钟。橙黄-G6 3-5分钟。95%酒精I、Ⅱ缸洗各1分钟。EA36或EA50 5分钟。95%酒精I、II缸洗各1分钟。*I、Ⅱ缸洗各1分钟。二甲苯I、Ⅱ缸透明各1。中性树胶封固。

　　如何让巴氏染色液为*：
 

　　细胞核着色不佳，细胞核着色过浅，盐酸分化时间过长或 苏木素染液时间过长。需要缩短分化时间或延长碱化时间；每日加入少量新鲜 苏木素染液或重新配制苏木素液。在固定之前制片干燥。所以对巴氏染色的制片需要严格遵守湿固定的原则。自来水的PH值偏酸性。使用碱性溶液。
 

　　细胞核着色过深，盐酸溶液浓度不够。适当加入几滴盐酸以增加浓度。制片用高于95%以上浓度的 酒精固定后可以出现染色过深。应用95%酒精固定。
 

　　细胞浆着色不佳，如果全片内胞浆都淡染，则需要延长染色时间或更换新液。如果胞浆不分色，均为浅红色。制片在固定前干燥或制片被有大量球菌样细菌影响胞浆染色。此情况可以适当增加染色时间能够部分纠正不分色状况。胞浆染成灰色或紫色，是由于 苏木素染色时间过长或盐酸分化不佳。经过褪色后重新 苏木素可以纠正。由于标本的不同，同样配方的EA染液可造成偏蓝、偏绿和偏红，对不同的标本应该使用不同的EA染液。一般认为，EA36和EA50用于妇科标本，而EA65或改良EA用于非妇科标本。